El rol de las mucinas en la superficie ocular


Las mucinas son glicoproteínas de alto peso molecular formadas por numerosas cadenas de azúcares unidas a una proteína central llamada apomucina, la cual está compuesta por repeticiones en tándem de residuos de serina, treonina y prolina. La cantidad de repeticiones de estos aminoácidos varia en cada gen que codifica a una mucina, por lo tanto, la longitud de estas proteínas tiene una gran variabilidad interindividual. Por sus características estructurales, las mucinas se pueden clasificar en mucinas libres (o secretadas) y mucinas transmembrana (o asociadas a la membrana). A su vez, las primeras se pueden dividir en mucinas formadoras de geles y mucinas solubles, según su tamaño y peso molecular. 18

Dentro de las funciones que cumplen las mucinas en la superficie ocular se incluyen: la permanencia y adherencia del film lagrimal, la lubricación de las estructuras para facilitar el parpadeo, la formación de una superficie sana sin irregularidades para lograr una buena visión y la provisión de una barrera “pegajosa” que permita atrapar y eliminar patógenos y otros desechos. Hasta el momento se sabe que en la superficie ocular se expresan al menos cuatro subtipos de mucinas secretadas (MUC5AC, MUC7, MUC2 y MUC19) y cuatro de mucinas asociadas a la membrana (MUC1, MUC4, MUC16 y MUC20).18

En cuanto a las mucinas libres, estas se disponen por encima del glicocáliz cubriéndolo y formando una capa móvil que atrapa los patógenos y desechos, para luego ser eliminadas por el parpadeo.17 Dentro de este grupo encontramos a las mucinas formadoras de geles, las glicoproteínas de mayor peso molecular, responsables de las propiedades reológicas del film lagrimal. Una de ellas, la mucina MUC5AC se expresa en la superficie ocular con mayor frecuencia y es secretada desde las células caliciformes conjuntivales hacia el film lagrimal. Formando parte del grupo de mucinas secretadas también podemos mencionar una mucina soluble pequeña (MUC7) que se expresa en las células acinares de las glándulas lagrimales.

Figura 2. Interacción de la película lagrimal y las mucinas de la superficie ocular

Como lo indica su nombre, las células caliciformes conjuntivales tienen forma de cáliz (también denominadas células goblet) y son células secretoras especializadas, ya que en su interior contienen numerosas vesículas que almacenan MUCSAC. El movimiento de los párpados durante cada parpa- deo distribuye uniformemente esta mucina sobre toda la superficie ocular para mantener la viscosidad y lubricación. También se observó que las células caliciformes se extienden por el epitelio conjuntival, pero su distribución varia según la ubicación anatómica, siendo más abundantes en el fórnix nasal inferior y en la región lid-wiper del párpado, ya que esta última está sujeta a más fricción por el parpadeo.

Adicionalmente, las células caliciformes están asociadas con el receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGF-R). Varios estudios han informado que la vía de señalización de EGFR desempeña un papel importante en la proliferación de células caliciformes y secreción de mucinas en el epitelio conjuntival.4,5

Con respecto a las mucinas transmembrana, también llamadas asociadas a la membrana, cuentan con un dominio que atraviesa la membrana celular, asegurando su anclaje, y un pequeño segmento intracelular que puede interactuar con proteínas citoplasmáticas, facilitando la transducción de señales. No obstante, el segmento más importante de estas mucinas es el dominio extracelular, es decir, la prolongación hacia el exterior de la célula, el cual puede extenderse hasta 500 nm desde la membrana celular para formar el glicocáliz.17

Varias mucinas de este tipo (MUC 3A, 3B, 4, 12, 13 y 17) tienen dos o más dominios similares al factor de crecimiento epidérmico (EGF) entre la región de repetición en tándem y el dominio asociado a la membrana. Los estudios realizados en ratones demostraron que los dominios similares al EGF juegan un papel en la regulación del crecimiento de las células epiteliales.17

La presencia de las mucinas transmembrana MUCI, MUC4 y MUC16 fue confirmada tanto en el epitelio conjuntival como en el epitelio corneal. Estas mucinas que forman parte del glicocáliz junto con otros componentes, tales como proteoglicanos y glicolípidos, se encuentran cubiertas por la capa móvil formada por las mucinas formadoras de geles que pueden interactuar con proteínas de acción bactericida en su porción hidrofílica.

De esta manera, las mucinas transmembrana (fijas) participan en la mojabilidad y humectación del epitelio que reviste toda la superficie ocular, mientras que las mucinas libres (móviles) captan desechos para que sean removidos hacia el conducto nasolagrimal por el movimiento de los párpados.17

En resumen, la calidad y cantidad de la capa mucoacuosa que forman las mucinas libres y transmembranas cumplen un papel fundamental en la lágrima natural, asegurando el contacto con la superficie ocular para mantener el epitelio hidratado en todo momento, evitar el daño celular por desecación y por fricción durante el parpadeo.

Referencias de este número:

  1. Bron AJ, de Paiva CS, Chauhan SK, Bonini S, Gabison EE, Jain S, et al. TFOS DEWS II pathophysiology report. Ocul Surf. 2017;15(3):438–510.
  2. Jones L, Downie LE, Korb D, Benitez-del-Castillo JM, Dana R, Deng SX, et al. TFOS DEWS II Management and Therapy Report. Ocul Surf. 2017;15(3):575–628.
  3. Itoh S, Itoh K, Shinohara H. Regulation of human corneal epithelial mucins by rebamipide. Curr Eye Res. 2014;39(2):133–41.
  4. Ríos JD, Shatos MA, Urashima H, Dartt DA. Effect of OPC-12759 on EGF receptor activation, p44/p42 MAPK activity, and secretion in conjunctival goblet cells. Exp Eye Res. 2008;86(4):629–36.
  5. Shatos MA, Ri´os JD, Horikawa Y, Hodges RR, Chang EL, Bernardino CR, et al. Isolation and Characterization of Cultured Human Conjunctival Goblet Cells. Investig Opthalmology Vis Sci. 2003 Jun
    1;44(6):2477.
  6. Tanaka H, Fukuda K, Ishida W, Harada Y, Sumi T, Fukushima A. Rebamipide increases barrier function and attenuates TNF-induced barrier disruption and cytokine expression in human corneal
    epithelial cells. Br J Ophthalmol. 2013 Jul;97(7):912–6.
  7. Malhotra C, Singh H, Jain AK, Gupta A, Ram J. Efficacy of 2% Rebamipide Suspension for Vernal Keratoconjunctivitis: A Clinical Comparison with Topical Immune Modulators Cyclosporine and
    Tacrolimus. Ocul Immunol Inflamm. 2022;30(5):1083–91.
  8. Kinoshita S, Awamura S, Nakamichi N, Suzuki H, Oshiden K, Yokoi N. A multicenter, open-label, 52-week study of 2% rebamipide (OPC-12759) ophthalmic suspension in patients with dry eye. Am J
    Ophthalmol. 2014;157(3):576-583.e1.
  9. Simsek C, Kojima T, Nakamura S, Dogru M, Tsubota K. The Effects of Rebamipide 2% Ophthalmic Solution Application on Murine Subbasal Corneal Nerves Aer Environmental Dry Eye Stress. Int J Mol
    Sci. 2019 Aug 18;20(16):4031.
  10. Igarashi T, Kobayashi M, Yaguchi C, Fujimoto C, Suzuki H, Takahashi H. Efficacy of Rebamipide Instillation for Contact Lens Discomfort With Dry Eye. Eye Contact Lens. 2018;44(November):S137–42.
  11. Kobashi H, Kamiya K, Shimizu K. Randomized Comparison between Rebamipide Ophthalmic Suspension and Diquafosol Ophthalmic Solution for Dry Eye aer Penetrating Keratoplasty. J Ocul
    Pharmacol Ther. 2017;33(1):13–8.
  12. Fukuda M, Takeda N, Ishida H, Seki Y, Shibata N, Takahashi N, et al. Benzalkonium Chloride-Induced Corneal Epithelial Injury in Rabbit Reduced by Rebamipide. J Ocul Pharmacol Ther.
    2022;38(1):85–91.
  13. Tokuda N, Kitaoka Y, Matsuzawa A, Miyamoto J, Sakae S, Munemasa Y, et al. The Effect of Rebamipide on Ocular Surface Disorders Induced by Latanoprost and Timolol in Glaucoma Patients. J
    Ophthalmol. 2015;2015:1–5.
  14. Arakawa T, Higuchi K, Fujiwara Y, Watanabe T, Tominaga K, Sasaki E, et al. 15th Anniversary of Rebamipide: Looking Ahead to the New Mechanisms and New Applications. Dig Dis Sci. 2005
    Oct;50(S1):S3–11.
  15. Kashima T, Itakura H, Akiyama H, Kishi S. Rebamipide ophthalmic suspension for the treatment of dry eye syndrome: A critical appraisal. Clin Ophthalmol. 2014;8:1003–10.
  16. Willcox MDP, Argüeso P, Georgiev GA, Holopainen JM, Laurie GW, Millar TJ, et al. TFOS DEWS II Tear Film Report. Ocul Surf. 2017 Jul;15(3):366–403.
  17. Gipson IK, Argüeso P. Role of Mucins in the Function of the Corneal and Conjunctival Epithelia. Int Rev Cytol. 2003;231:1–49.
  18. Hori Y. Secreted mucins on the ocular surface. Investig Ophthalmol Vis Sci. 2018;59(14 Special Issue):DES151–6.
  19. Mantelli F, Tiberi E, Micera A, Lambiase A, Visintini F, Bonini S. MUC5AC overexpression in tear film of neonates. Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol. 2007 Aug 13;245(9):1377–81.
  20. Stapleton F, Alves M, Bunya VY, Jalbert I, Lekhanont K, Malet F, et al. TFOS DEWS II Epidemiology Report. Vol. 15, Ocular Surface. Elsevier Inc.; 2017. p. 334–65.
  21. Craig JP, Nichols KK, Akpek EK, Caffery B, Dua HS, Joo CK, et al. TFOS DEWS II Definition and Classification Report. Ocul Surf. 2017;15(3):276–83.
  22. Lee JH, Ahn HS, Kim EK, Kim TI. Efficacy of sodium hyaluronate and carboxymethylcellulose in treating mild to moderate dry eye disease. Cornea. 2011 Feb;30(2):175–9.
  23. Hodges RR, Bair JA, Carozza RB, Li D, Shatos MA, Dartt DA. Signaling pathways used by EGF to stimulate conjunctival goblet cell secretion. Exp Eye Res [Internet]. 2012 Oct;103(1):99–113. Available
    from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0014483512002680
  24. Kinoshita S, Oshiden K, Awamura S, Suzuki H, Nakamichi N, Yokoi N. A Randomized, Multicenter Phase 3 Study Comparing 2% Rebamipide (OPC-12759) with 0.1% Sodium Hyaluronate in the
    Treatment of Dry Eye. Ophthalmology. 2013 Jun;120(6):1158–65.
  25. Ogawa M, Simsek C, Kojima T, Nagata T, Igarashi A, Kawakita T, et al. The Effect of Rebamipide Ophthalmic Solution on Cytokine and Mucin Secretion in Culture of Conjunctival Epithelial Cells from
    the Cu, Zn-Superoxide Dismutase-1 (SOD-1) Knock-Down Mouse. Eye Contact Lens. 2019;45(2):93–8.
  26. Ross EF, Berra A. Eficacia de rebamipida 2 %, suero autólogo y combinación de ambos en la mejoría de los síntomas oculares en ojo seco hiposecretor: estudio piloto cruzado , controlado , aleatorizado
    y abierto. 2021;90:210–8.
  27. Arimoto A, Kitagawa K, Mita N, Takahashi Y, Shibuya E, Sasaki H. Effect of rebamipide ophthalmic suspension on signs and symptoms of keratoconjunctivitis sicca in sjögren syndrome patients with
    or without punctal occlusions. Cornea. 2014;33(8):806–11.
  28. Takahashi Y, Ichinose A, Kakizaki H. Topical rebamipide treatment for superior limbic keratoconjunctivitis in patients with thyroid eye disease. Am J Ophthalmol. 2014;157(4):807-812.e2.
  29. Itakura H, Itakura, Kashima T, Akiyama, Kishi. Topical rebamipide improves the ocular surface in mild lagophthalmos. Clin Ophthalmol. 2013 Jul;7:1333.
  30. Kashima T, Akiyama H, Miura F, Kishi S. Resolution of persistent corneal erosion aer administration of topical rebamipide. Clin Ophthalmol. 2012;6(1):1403–6.
  31. Hayashi Y, Toshida H, Matsuzaki Y, Matsui A, Ohta T. Persistent corneal epithelial defect responding to rebamipide ophthalmic solution in a patient with diabetes. Int Med Case Rep J. 2016;9:113–6.
  32. Itakura H, Kashima T, Itakura M, Akiyama H, Kishi S. Topical rebamipide improves lid wiper epitheliopathy. Clin Ophthalmol. 2013;2137.
  33. Igarashi A, Kamiya K, Kobashi H, Shimizu K. Effect of Rebamipide Ophthalmic Suspension on Intraocular Light Scattering for Dry Eye aer Corneal Refractive Surgery. Cornea. 2015;34(8):895–900.

Artículos recomendados